一、基础信息
- 英文名称:Fluoro-Jade C (FJC) Ready-to-Dilute Staining Kit for identifying Degenerating Neurons
- 中文名称:氟橘素C(FJC)即用型染色试剂盒
- 品牌:Biosensis
- 规格:20ml、40ml
- 检测目标:退化神经元(包括细胞体、轴突、树突及末梢)
- 适用物种:人、小鼠、大鼠及其他哺乳动物(预测适用)
- 检测方法:荧光显微镜观察(激发光495 nm,发射光521 nm,绿色荧光信号;DAPI复染细胞核,紫外光激发,蓝色信号)
- 兼容性:支持冰冻切片、石蜡切片、甲醛或多聚甲醛固定组织
二、核心原理
1. 荧光染料特性
- FJC分子结构:FJC是一种亲脂性阳离子染料,可渗透受损神经元细胞膜,并与细胞内阴离子成分(如蛋白多糖、RNA)结合,形成稳定复合物。
- 选择性标记机制:仅结合退化神经元(包括凋亡、坏死或其他损伤形式),正常健康神经元无背景信号。
- 信号稳定性:FJC荧光信号不易淬灭,适用于长期保存和重复观察。
2. 技术优势对比
- 与传统尼氏染色对比:
尼氏染色依赖活体神经元内粗面内质网和游离核糖体,无法区分退化阶段;FJC直接标记退化神经元,灵敏度更高。
- 与TUNEL法对比:
TUNEL检测DNA断裂,主要标记晚期凋亡;FJC可标记更早期的退化神经元(如轴突变性),且不受细胞死亡机制限制。
3. 多维度验证能力
- 联合染色:可与DAPI(核染)、GFAP(星形胶质细胞标记)、IBA-1(小胶质细胞标记)等抗体联用,解析退化神经元的微环境。
- 光谱兼容性:适配荧光显微镜多通道成像,便于区分不同细胞类型。
三、解决的核心实验问题
1. 神经退行性疾病的机制研究
- 应用场景:阿尔茨海默病、帕金森病、脑卒中、创伤性脑损伤等模型中,定位退化神经元分布及动态变化。
- 典型案例:文献显示,FJC可标记糖尿病大鼠海马CA3区的退化神经元(Wang et al., 2020),辅助揭示疾病进展的时空规律。
2. 药物疗效评估
- 功能验证:筛选神经保护剂(如抗氧化剂、抗炎药物)的效果,通过减少FJC阳性细胞数量评估干预手段的有效性。
- 案例:Pomalidomide通过抑制氧化应激显著降低创伤性脑损伤后的FJC信号(Huang et al., 2024)。
3. 组织样本质量控制
- 样本优化:指导实验者改进组织固定、灌注条件,减少假阳性(如血管染色干扰)。
- 解决方案:推荐使用高灌注压力、快速冷冻切片,或通过形态学区分神经元与血管染色。
四、产品优势
1. 高灵敏度与特异性
- 全类型覆盖:检测所有退化机制(缺血、缺氧、毒性、炎症等)导致的神经元损伤。
- 低背景干扰:严格优化洗涤步骤,结合DAPI复染提升信噪比。
2. 兼容性与灵活性
- 组织类型适配:支持新鲜冰冻、福尔马林固定石蜡包埋(FFPE)等多种样本类型。
- 实验流程自由度:可整合免疫组化(IHC)、免疫荧光(IF)等多重标记技术。
3. 实验便捷性
- 即用型设计:提供预混试剂(如10X FJC原液),无需复杂配制。
- 快速检测周期:单次染色耗时约2小时,适合高通量样本分析。
4. 数据可靠性
- 文献支持:已发表文献超180篇(截至2025年),涵盖神经科学、药理学等领域(如Liu et al., 2025;Hongtao et al., 2025)。
- 质量控制:试剂盒含阴性对照(正常组织)和阳性对照(损伤模型),确保结果可重复性。
五、目标客户群体
1. 神经科学研究者:高校、研究所的神经生物学、病理学实验室。
2. 临床转化团队:医院神经内科、精神科的科研人员。
3. 制药企业:从事神经退行性疾病、脑损伤治疗药物研发的药企。
4. 教育机构:医学院校教学实验室(需提前验证实验方案)。
六、订货与使用信息
1. 订购指南
- 试剂盒组成:
- FJC染色液(10X浓缩,需稀释10倍)
- KMnO₄溶液(10X浓缩,需稀释10倍)
- 氢氧化钠溶液(10X浓缩,需稀释10倍)
- DAPI染核试剂(即用型)
- 实验耗材(载玻片、盖玻片、染色缸等建议自备)
- 规格选择:根据样本量选择50 mL或100 mL装(具体型号需咨询供应商)。
2. 存储条件
- 未开封试剂:2-8℃避光保存,保质期6个月(自收货日起)。
- 稀释后试剂:FJC工作液需现配现用(4小时内用完);其余稀释液4℃避光保存不超过48小时。
3. 关键注意事项
- 样本处理:充分脱水与通透化处理可减少非特异性染色。
- 设备需求:需配备荧光显微镜(带FITC/DAPI双通道激发)。
- 生物安全:含刺激性化学试剂,操作时需佩戴手套及护目镜。
4. 供货商:上海起发
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